限于篇幅 ，本文只探讨3个议题 ，对其它相关问题感兴趣的读者请阅文末的参考文献。
将ELISA要领转移到其它剖析平台
在开发临床前LBA剖析要领时 ，ELISA可能是首选的要领 ，因其简朴性 ，低本钱 ，并且不需要专门的仪器装备。可是 ，若是ELISA要领不可知足迅速度和稳健性要求时 ，特殊是对GLP毒理/毒代研究而言 ，需要在一个CRO实验该研究时 ，往往需要将一个ELISA要领转移到MSD或者GYROS平台至上实验。
MSD
从ELISA转移到MSD平台相对简朴 ；当使用特定抗体对的ELISA要领无法抵达所需要的迅速度时 ，会经常实验这样的转移来镌汰基质效应 ，提高迅速度或增添定量动态规模。然而 ，就像其它要领转移一样 ，试剂的差别和差别的修饰（modifications） ，如ruthenium或生物素标记 ，可能会影响要领的效能。因此 ，虽然可以在MSD上重新使用已有的抗体对和测试名堂 ，但将需要调解校准品（Cs）和QCs的浓度 ，并充分验证新的要领。
Gyrolab
在理想的情形下 ，需要小体积样本或半自动化的剖析要领应当直接在Gyrolab平台上开发。若是一对抗体（antibody pair）可用于相同的捕获-检测组合 ，则将ELISA要领直接乐成地转移到Gyrolab上的可能性更大 ； 只管可能需要重新优化 ，以提高迅速度和/或扩展动态规模。 重新优化包括测试抗体对的组合 ；调解抗体浓度 ，以最大化迅速度和动态规模 ；测试选择性 ，以只管镌汰MRD ；以及重修动态规模和QC水平。在转移要领到Gyrolab平台的时间 ，修改试剂 ，如使用生物素（biotin）或荧光标记 ，也会影响测定性能。在任何情形下 ，都需要在此平台实验完全的要领验证。
BIAcore
BIAcore和ELISA之间的差别太大 ，不可直接转移剖析要领 ；因此 ，需要举行要领的再开发 ，和周全的要领验证。 由于BIAcore是一个基于流体的系统 ，因此不宜直接与基于固相（例如 ，微孔板）的免疫测试要领举行较量。需要进一步开发BIAcore要领 ，例如芯片的牢靠（immobilization）和再生条件 ，用于牢靠和再生缓冲液的试剂 ，试剂的稳固性 ，确定标准品和质量控制样品 ，以及配体团结测试（LBA）要领的其他方面。
Luminex
若是以Luminex名堂定量单个待测物 ，则从ELISA名堂的要领转移在测试要领的结构方面很是简朴 ，只管需要制备 ，评估和验证新的试剂（例如 ，dye-coated beads ，荧光标记的检测抗体）。有时 ，在洗涤办法中需要特另外微孔板（真空或磁珠板）。若是需要将多个ELISA要领组合并转移到一个Luminex要领（由于其multiplexing功效） ，则需要举行特另外研究 ；并且 ，优化要领参数可能需要更多的要领开发时间。总体而言 ，必需周全验证单通路和multiplex名堂的Luminex要领 ；ELISA要领中使用的条件有助于确定开发Luminex要领的名堂和抗体对。
剖析大数目样本和仪器故障
MSD
关于在MSD上的样天职析 ，校准品（Cs）和QCs的位置通常与ELISA的位置相同。另一方面 ，值得注重的是：对微孔板一次只读取四个孔的数据 ，并且在施加电压后只能读取一次。因此 ，若是爆发仪器故障 ，可能无法测定整个校准曲线 ；或者取决于微孔板设置（plate set-up） ，可能缺少一组QC的一部分 ，这通常爆发在水平设置（horizontal set-up）中。关于笔直设置（vertical set-up） ，更有可能获得校准品和第1组QC ，而不是第二组QC。在这两种情形下 ，将需要重新读取整个微孔板。若是仪器爆发故障 ，并且读数缓冲液已添加到微孔板中 ，则可能需要重新剖析（re-assay）样品 ，由于检测信号会随时间显著地镌汰。
Gyrolab
通常 ，一个剖析运行被界说为一个CD ，在每个CD上都安排有校准品和 QCs。若是安排在差别CDs上的QCs的细密度和误差切合接受标准 ，则在无人值守的运行中处置惩罚的最多五张CDs的系列可以界说为一个单次运行。 这需要测试和评估一个给定的名堂是否知足上述接受标准 ，由于这取决于能否快速捕获待测物的和试剂的稳固性。
需要将接受标准应用于每个CD ，这意味着具有失败的QCs和/或失败校准曲线的CDs会被拒绝 ，而来自统一个多个CD运行中的其它CDs可以通过。若是含多个CD的运行仅有一条标准曲线 ，并且此曲线不切合接受条件 ，则此多个CD的运行的所有数据将被拒绝。由于多个CD运行的危害 ，故应在要领验证时 ，需要对样品剖析时的校准曲线和QCs设置举行评估。在任何情形下 ，每个CD都必需含有QCs。
若是在运行历程中嫌疑针头故障 ，例如 ，视察到结构之间（inter-structure）高的CVs ，则需要使用供应商提供的仪器一样平常维护测试要领 ，测试液体处置惩罚装置的性能。故可以识别不切合接受标准的样本 ，校准品或QCs所使用的针头 ，并可以在未来的运行中重新剖析。液体处置惩罚装置有10个针头 ，剖析数据指明晰用于转移某一样本的针头。
一些较新的LBA剖析平台 ，包括Gyrolab ，提供比ELISA更宽泛的动态规模。只管云云 ，仍建议使用相同数目的校准品和 QCs（在每个CD/微孔板的每个QC级别重复两次）举行验证（LLOQ ，LQC ，MQC ，HQC ，ULOQ）和样品剖析（LQC ，MQC ，HQC） ，犹如对ELISA要领建议的那样。
Luminex
常见的做法是设置板中（in-plate）校准品 ，并重复（duplicate）剖析校准品和样本。校准品的规模通常比 ELISA的规模更宽 ，以顺应种种待测物浓度 ，并确定每个待测物的校准曲线和QCs响应。值得指出 ，关于另一种待测物 ，校准曲线上的锚定点可能纷歧样。
若是仪器在运行中失败（即 ，爆发一个部分运行partial run） ，只要相关校准品和QCs乐成完成且可以接受 ，则仍然可以使用已剖析样本的数据。与某些顺序测定平台（sequential platforms）相比 ，这不太令人担心 ；而在那些顺序平台上 ，只有有限的QCs位于相对较大宗的样本之间 ；这样的话 ，就可能没有足够的QCs来判断许多样天职析的效果是否有用。
BIAcore
该平台与RIA一样 ，系列式地（in series）剖析样品 ，并使用微孔板加载样本。因此 ，有两种要领可以运行 BIAcore 样天职析。与 ELISA一样 ，按96孔 ，设置校准品和QCs ；或者将两个板（或更多）可以作为一个整体来运行：在最先时 ，剖析校准品 ，并且在整个样天职析中穿插几组QCs。爆发部分运行效果的缘故原由 ，可能是由于仪器故障 ；也可能是由于未知缘故原由导致QC失败。应凭证爆发的情形和时间处置惩罚仪器故障。在由于未知缘故原由导致QC失败的情形下 ，当两组已接受的QCs之间的所有样本都需要重新剖析时 ，可以使用bracket approach ，如表3所示。
表3. Biacore样天职析设置
总体而言 ，若是40%或更多个QC失败 ，则必需重新剖析 ，在可接受的最后一组QC之后的 ，所有样本。只有在运行最先时的一组QC都通过了的情形下 ，才华接受第一组样本的剖析效果。若是QC的乐成和失败是零星的（sporadic） ，则整个样天职析运行失败 ，必需举行缘故原由视察。RIA使用类似的要领 ，系列式地剖析一组试管。
实验样天职析的最佳实践
1.在要领开发的历程中 ，最好消除残留（carry-over） ，而不是在样天职析中加以盘算校正。
2.关于每个平台 ，应使用短期稳固性数据来确定每次运行的一连时间 ，以确保样本稳固性。
3.一个剖析运行不限于96个数据点（校准品加样本） ；例如 ，关于基于差别硬件支持 ，如CD和/或系列运行[run in series] ，如RIA ，BIAcore ，Erenna® ，和 Gyrolab的平台。
4.在剖析运行最先时 ，首先剖析标（校）准曲线 ；之后 ，以合理的频率在运行中距离地剖析QCs ，以验证该剖析平台上的效果。取决于怎样界说一个剖析运行 ，可以在每个固体支持（solid support）上设置校准品 ，也可以设置在一个微孔板/CD上 ；之后是QCs距离的一系列样本。无论一个剖析运行是怎样界说的 ，应当有纪律地多次剖析QCs ，以确认运行内的细密度。
5.只要在要领验证时代确定的%CV在可接受的规模内 ，例如 ，小于或即是现在能够接受的15%（对小分子而言） ，则可以举行单个样品剖析 ，并接纳最严酷的接受标准。若是运行凌驾多个固体支持 ，则%CV标准指的是重复（duplicate）运行的QCs ，和包括多个固体支持的运行内细密度。
6.关于要领转移 ，在更改剖析要领的平台或名堂时 ，大大都平台需要重新验证 ；即即是部分验证也可能错过对一些要害参数的评估。因此 ，建议对样天职析要领举行完整的重新验证。
7.Multiplexing：建议尽可能在待测物的混淆物中 ，验证每一个待测物。在样天职析时代 ，若是一个待测物的剖析失败 ，则应重新剖析所有样本 ，并屏障先前及格待测物的剖析效果。
总结与前瞻
总之 ，大大都药物发明阶段的PK/PD免疫剖析可以在MSD或Gyrolab平台上举行。Gyrolab还具有运行时间短 ，样本体积小和自动化 ，等附加优势 ，因此对临床宿世物剖析极具吸引力。无论剖析平台怎样 ，本文强烈建议 ，在最终所需剖析要领的统一平台上 ，筛选试剂和评估要领的性能。在另一方面 ，超高迅速度和multiplexing平台是特殊的应用平台 ，通常不可对试剂举行高通量筛选。因此 ，可以首先在ELISA ，MSD ，Gyrolab或BIAcore（SPR手艺）平台上对试剂举行筛选 ，然后在相关特殊平台上优化并最终建设相关要领。Simoa™平台因其超高迅速度（可以使用微量样本体积）和自动化操作 ，在相当的水平上可以替换Gyrolab平台 ，用于临床前PK样天职析。
针对可溶性靶标的新药项目 ，需要在要领开发的最先 ，就使用BIAcore平台使用的SPR手艺来战胜耐受性（tolerance）问题。选择剖析平台时 ，应当切记最终目的。虽然获得完善的要领参数是最理想的 ，但就检测要领的局限性和项目需求而言 ，需要切合现实 ；因此 ，需要有愿意在使用的样本体积或剖析运行的时间 ，等参数上 ，做出妥协 ，以知足整体需求。与项目团队优异的相同有助于确定相关事情的优先级别 ，知足对剖析要领的需求并知足相关时间表。当项目的目的预期爆发转变时 ，需要对剖析要领的名堂坚持足够的无邪性 ，以便在差别的剖析平台之间 ，轻松地转移剖析要领。
每个平台在检测试剂 ，如Sulfo-tag、horseradish peroxidase（HRP或其他酶）方面 ，差别最大。因此 ，试剂的生物素化（biotinylation） ，当与各自对应的链球菌卵白标记的试剂（streptavidin-tagged reagents）一起使用时 ，可以实现剖析要领在这些平台之间的无缝转移。在需要将捕获试剂生物素化的平台（Gyrolab）上 ，这些生物素化的试剂可以作为捕获（capture）使用。无论是剖析针对可溶性靶标的药物的游离的 ，照旧团结的百分比 ，或是剖析重大分子的分子完整性 ，都应当使用免疫测试要领的多功效性（versatility） ，并响应地思量合适的剖析平台。虽然免疫剖析领域正在迅速生长 ，但LC-MS等正交性生物剖析平台也在平行地生长 ，有时可以作为免疫剖析要领的增补。因此 ，充分相识正交剖析平台 ，并实时向这些平台的团队提醒研究偏向 ，将有助于项目的乐成。后续文章将先容相关希望 ，敬请关注。
特殊声明
本文若有疏漏和误读相关指南和数据的地方 ，请读者谈论和指正。所有引用的原始信息和资料均来自已经揭晓学术期刊、官方网络报道等果真渠道, 不涉及任何保密信息。 参考文献的选择思量到多样化但也不可能完整� ＝哟琳咛峁┯屑壑档奈南准捌淦拦�。
参 考 文 献
1. Eangoor, P. (2020). "A guided approach to preclinical bioanalysis of proteins using immunoassays for pharmacokinetic and pharmacodynamic assessments." Bioanalysis 12(16): 1105-1110.
2. Fischer SK, et al. Emerging technologies to increase ligand binding assay sensitivity. AAPS J. 17(1), 93–101 (2015).
3. Dudal S, et al. Assay formats: recommendation for best practices and harmonization from the Global Bioanalysis Consortium Harmonization Team. AAPS J. 16, 194–205 (2014).
4. Patel SR, et al. Microsampling for quantitative bioanalysis, an industry update: output from an AAPS/EBF survey. Bioanalysis 11(7), 619–628 (2019).
5. Roman J, et al. Application of miniaturized immunoassays to discovery pharmacokinetic bioanalysis. J. Pharmacol. Toxicol. Methods 63(3), 227–235 (2011).
6. Leary BA, et al. Bioanalytical platform comparison using a generic human IgG PK assay format. J. Immunol. Methods 397(1–2), 28–36 (2013).
7. Duo J, et al. Surface plasmon resonance as a tool for ligand-binding assay reagent characterization in bioanalysis of biotherapeutics. Bioanalysis 10(8), 559–576 (2018).
8. Spengler M, et al. Highly sensitive ligand-binding assays in pre-clinical and clinical applications: immuno-PCR and other emerging techniques. Analyst 140(18), 6175–6194 (2015).
9. Lind K, Kubista M. Development and evaluation of three real-time immuno-PCR assemblages for quantification of PSA. J. Immunol. Methods 304(1–2), 107–116 (2005).
10. Attallah C, et al. Design and validation of an immuno-PCR assay for IFN-α2b quantification in human plasma. Bioanalysis 11(23), 2175–2188 (2019).
11. Woodbury N, et al. Application of multiplexed pharmacokinetic immunoassay to quantify in vivo drug forms and coadministered biologics. Bioanalysis 11(24), 2251–2268 (2019).
12. Stevenson LF, Purushothama S. Parallelism: considerations for the development, validation and implementation of PK and biomarker ligand-binding assays. Bioanalysis 6(2), 185–198 (2014).
13. Lee JW, et al. Fit-for-purpose method development and validation for successful biomarker measurement. Pharm. Res. 23(2), 312–328 (2006).
14. Stevenson L, et al. Large molecule specific assay operation: recommendation for best practices and harmonization from the Global Bioanalysis Consortium Harmonization Team. AAPS J. 16(1), 83–88 (2014).
15. Desilva B, et al. Recommendations for the bioanalytical method validation of ligand-binding assays to support pharmacokinetic assessments of macromolecules. Pharm. Res. 20(11), 1885–1900 (2003).
16. Lee JW, et al. Bioanalytical approaches to quantify ‘total’ and ‘free’ therapeutic antibodies and their targets: technical challenges and PK/PD applications over the course of drug development. AAPS J. 13(1), 99–110 (2011).
17. Pearson JT, Rock DA. Bioanalytical approaches to assess the proteolytic stability of therapeutic fusion proteins. Bioanalysis 7(23), 3035–3051 (2015).
18. Vasicek LA, et al. Direct quantitation of therapeutic antibodies for pharmacokinetic studies using immuno-purification and intact mass analysis. Bioanalysis 11(3), 203–213 (2019).
